PCR技術(shù)專題：直接原位PCR（In situ PCR）
更新時間：2013-11-14 瀏覽次數(shù)：1114
原位PCR是原位雜交細胞定位和PCR的高靈敏度相結(jié)合的技術(shù)，使得靶基因檢測有了極大的改進。此技術(shù)是在細胞（爬片、甩片或涂片）或組織（石蠟、冰凍切片）上直接對靶基因片段進行擴增，通過摻入標記基團直接顯色或結(jié)合原位雜交進行檢測的方法。
一、組織切片和細胞樣品的制備
試劑與配置
10%福爾馬林；二甲苯；PBS
操作方法
1. 用10%福爾馬林固定組織8~15hr，石蠟包埋，切片（4μm），將切片置于新鮮的二甲苯中處理5min，放入無水乙醇中浸泡5min，取出，空氣干燥；
2. 對于培養(yǎng)細胞，可直接制備爬片，也可有PBS洗細胞一次，加10%福爾馬林靜置，用橡膠刮下細胞；用PBS洗細胞兩次，2000rpm×3min，用5ml PBS重懸細胞，即可用甩片機甩片或直接吸50μl點在載玻片上。
二、切片預處理（蛋白酶消化）
試劑與配置
0.1mol/L Tris-HCl （pH7.4）
緩沖液A：0.1mol/L Tris-HCl （pH7.4），0.3% Tween-20，0.5% NP-40
蛋白酶K：20-50μg/ml，溶于TE中
操作方法
1. 干燥后的切片置于0.1mol/L Tris-HCl （pH7.4）中，室溫孵育5min；
2. 浸入緩沖液A中，室溫孵育10min；
3. 滴加20μl蛋白酶K液于標本上，在濕盒中37℃孵育20min；
4. 在室溫下，用0.1mol/L Tris-HCl （pH7.4）漂洗兩次，每次5min。
三、原位擴增（以標記生物素為例）
試劑與配置
PCR反應緩沖液：兩種引物各100pmol，dATP、dCTP、dGTP和dTTP各200μmol， Bio-dUTP 50mol，1×PCR緩沖液；
Tag酶：5U/μl
緩沖液B：0.01mol/L PBS，0.1% Triton-X100
指甲油（市售）
無水乙醇
操作方法
1. 切片用1×PCR緩沖液平衡3次，每次5min；
2. 用濾紙吸去切片上多余的液體，置60℃，每片加入30μl PCR反應緩沖液，5U Tag酶，用蓋玻片封片，四周封以指甲油，防止蒸發(fā)；
3. 94℃變性5min，按下列條件（94℃×2min，55℃×2min，72℃×3min）循環(huán)20~25次后，72℃延伸5min；
4. 玻片浸入無水乙醇中10min，以軟化指甲油；
5. 用刀片撬開蓋玻片并除去；
6. 用緩沖液B漂洗兩次，每次3min；
7. 用無水乙醇固定5min，并吹干。
四、檢測（以ABC法為例）
試劑與配置
緩沖液C：0.1mol/L Tris-HCl （pH7.5），0.1mol/LNaCl，2mmol/L MgCl2， 0.5% Triton-X100
封閉液：3%BSA（溶于緩沖液C中）
顯色液：0.05%DAB，溶于0.05mol/L Tris-HCl （pH7.4），臨用前每10ml加30%過氧化氫50μl
1%鹽酸酒精液
蘇木素染色液
操作方法
1. 用30μl 3%BSA滴加在玻片上，封閉1hr；
2. 用緩沖液C簡洗1min，每片滴加ABC復合物20～30μl，室溫放置40min；
3. 緩沖液B室溫漂洗3次，每次15min；
4. 滴加顯色液于玻片上，鏡下觀察控制顯色時間（一般7～14min）；
5. 流水洗片，浸入蘇木素液中復染30s，1%鹽酸酒精分化（提抽2次）；
6. 常規(guī)脫水、透明、封片，鏡下觀察。